Examen Practico 3ER Parcial

Operar Equipo y
Material de laboratorio

Examen Práctico.






Centro de bachillerato tecnológico, industrial y de servicios no.155

Materia: Operar equipo y materiales de laboratorio.


Segundo semestre.


Examen Práctico.


Nombre del alumno: Borjas Young Miriam Alejandra.



Mesa #3

Grupo: 2LM


Profesor: Víctor Manuel Alfaro López.

Índice.
-Portada
-Datos personales
-Bitácora de examen
-Competencias
-Introducción
-Desarrollo de prácticas
-Conclusión

INTRODUCCION.
En este documento se presenta el desarrollo de nuestro examen practico, también señala las competencias utilizadas tanto en la materia como en las practicas.

Competencias aplicadas en Operar Equipo y Materiales de Laboratorio.

Categoría: Aprende de forma autónoma.
Competencia: Aprender por iniciativa e interés propio a lo largo de la vida.
Categoría: Trabaja en forma colaborativa.
Competencias: Participa y colabora de manera en equipos diversos.
Categoría: Se expresa y se comunica.
Competencia: Escucha, interpreta y emite mensajes pertinentes en distintos contextos mediante la utilización de medios, códigos y herramientas apropiadas.
Categoría: Se autodetermina y cuida de si.
Competencia: Se conoce y valora así mismo y aborda problemas y retos teniendo en cuenta los objetivos que persigue.

Desarrollo:

Examen Práctico.

Practica # 1 y # 2

Lunes 15 de junio.

Comenzamos por llenas nuestro vale de material, vestimos la mesa con papel blanco, adaptamos nuestra área de trabajo para iniciar la práctica.
Hicimos nuestra regla de 3 para darnos cuenta cuantos gramos pondríamos en cada caja.
Tomamos 80 ml de agua destilada para 4 cajas petri cuya cantidad para cada una es de 5 gr. aproximadamente. Mezclamos el agar con el agua y dejamos 1 min. Para que se concentrara y después lo dejamos 1 min. En el mechero, muñequeando para que hirviera, y ya que hirvió, teníamos que taponear con una torunda de algodón y enrollarla con tape para con eso tapar el matraz. Revisamos el autoclave que estuviera lista para introducir el matraz con el agar, pero antes teníamos que rotular el matraz con los datos siguientes:
v Hora
v Fecha
v Nombre del medio de cultivo
v No. De mesa
v Grupo

Ya lista, metimos los matraces de las 6 mesas y esperamos alrededor de 20 a 30 minutos.
Después en el transcurso del tiempo realizamos también la práctica 8 y 9.
Comenzamos por hacer la técnica de venopuncion a dos compañeros. Vaseamos la sangre ,2.5 ml del tubo de ensaye tapón morado y 2.5 ml al tubo con tapón rojo.
En total obtuvimos 10 ml de sangre, 5 de cada compañero.
Después metimos los tubos de tapón rojo a la centrifuga para que se separara a 1500 revoluciones por minuto durante 5 minutos.
Mientras se centrifugaba la sangre iniciamos con la práctica de aglutinación en sangre.

MATERIALES DE LA PRÁCTICA # 1 Y # 2

• Autoclave
• 4 cajas petri
  
• Agua destilada
  
• Balanza
• Vidrio de reloj
  
• Agar verde brillante
  
• Vaso de precipitado
  
• Probeta
• Agitador
• Espátula
• Mecheros de bunsen
• Tape
• Algodón

Practica # 9

Consistió en tomar un poco de sangre con la pipeta pasteur y su bulbo y colocar 3 gotitas en la laminilla excavada. Después colocamos encima de cada gotita de los reactivos anti A, anti B y anti D o RH y revolvimos bien para darnos cuenta del tipo de sangre.
Era ahí cuando comenzaba la aglutinación en el RH de los 2 compañeros se aglutino.
Se observaba como se aglutinaba la sangre.

MATERIALES DE LA PRÁCTICA #9

• Jeringa hipodérmica
  
• Torundas de algodón secas y con alcohol
  
• Tubo de ensaye de tapón morado
  
• Pipeta pasteur y su bulbo
  
• Laminilla escavada
  
• Palitos de madera
  
• Reactivos
  
• Torniquete
  
  
  Practica # 8

Ya que se centrifugo la sangre del tubo, punteamos 6 gotas de cada tubo en la laminilla continuamos por ponerle ahora 6 gotas de los reactivo H, O, A, B Brucella A y Proteus 0x19 y revolvimos con los palitos de madera y observamos. Ya listo enfocamos en objetivo 10x en el microscopio pero no hubo aglutinación.

MATERIALES DE LA PRÁCTICA # 8

• Jeringa hipodérmica
  
• Centrifuga
  
• Torniquete
  
• Torundas de algodón
  
• Tubo de ensaye de tapón rojo
  
• Microscopio
  
• Pipeta pastear
  
• Palitos de madera
  
• Laminilla escavada
  
• Reactivos
  

Terminando las prácticas 8 y 9 terminamos por hacer el vaciado a las cajas esterilizando la boquilla del vaso de precipitado de 50 ml. Para no contaminar el medio, ya vaseado todo lo del medio a las cajas rotulamos y las metimos al refrigerador.


Practica # 3

Martes 16 de junio

MATERIALES

• Mecheros de bunsen
  
• Tubo de ensaye
• Tubo cónico
  
• Gradilla
  
• Centrifuga
  
• Asa bacteriológica
  
• Jeringa
  
• Torundas
  
• Cajas petri con medio de cultivo
  
• Torniquete
  
• Hisopo
  
  
  DESARROLLO
  

Iniciamos por ponernos nuestro equipo de bioseguridad. Nosotros ya traíamos las muestras que íbamos a sembrar que eran orina y copro.
Comenzamos a esterilizar las asas bacteriológicas
Después tomábamos un poco de la muestra y sembrábamos dependiendo del tipo de siembra
Continuábamos esterilizando y tomando de la muestra hasta que quedo listo.
Rotulamos de nuevo y metimos las cajas a la estufa.

Practica # 4
En esta práctica observamos lo que creció en el medio de cultivo.

Practica #5

Frotis

MATERIALES:

• Cajas petri con medio de cultivo elaborado
  
• Asa bacteriológica
  
• Vaso de precipitado de 25 ml de agua destilada
  
• 2 mecheros de bunsen
  
• Papel secante
  
• Portaobjetos
  
• Papel para vestir mesa

DESARROLLO:

Tomamos un portaobjetos limpio para realizar el frotis.
Esterilizamos el asa bacteriológica en el mechero, después tomamos una gota de agua con el asa y la colocamos en el portaobjetos, agarramos un poco de la muestra de nuestras cajas y colocamos en el porta y comenzamos a hacer el barrido para que no quedara grueso, el movimiento es de derecha a izquierda.
Y si faltaba mas agua le poníamos hasta que se mirara delgado.
Ya que terminamos lo pasamos por el mechero para que se secara.

Practica #6

Continuamos por hacer la tinción:

MATERIALES:

• Portaobjetos con frotis
  
• Papel secante
  
• Cristal violeta
  
• Lugol
  
• Alcohol
  
• Safranina
  
• Algodón seco
  
• Caja copli
  

Comenzamos por colocar el portaobjetos en la primera solucion de cristal violeta por 1 min.
Seguimos por lavar con solucion lugol.
Cubrimos con lugol por 1 min., escurrimos y descoloramos con alcohol. Lavamos con agua, safranina por 1 min. . Y secamos al aire.
Después de teñir la lamina llevando a cabo estas reglas y pasos seguimos por enfocar.

Practica #7

MATERIALES:

Portaobjetos teñido

Microscopio

Papel secante

Aceite de inmersión

Papel para vestir mesa

DESARROLLO:

Colocamos el portaobjetos en la platina, ya con el aceite de inmersión, subimos la platina, colocamos el objetivo 100x, Tenemos que pegar la gota del aceite al objetivo. Movemos el tornillo micrométrico para encontrar la imagen deseada.



Conclusión.

Este trabajo es con el fin de recopilar datos de nuestro examen práctico y también para entrelazar las competencias con nuestras prácticas realizadas.